产品中心
PRODUCTS CENTER
- 产品描述
- 适用范围
- 验证数据
- 参考文献
- COA
-
- 商品名称: 糖原PAS快速染色液
- 商品编号: BP-DL033
- 货号（表格）: BP-DL033
- 价格（表格）: 370
- 规格: 3×100mL
- 规格（表格，必填）: 3×100mL
- 货期: 备现货
- 储存条件: 2-8℃，避光
- 有效期: 12个月
【货号】 BP-DL033
【规格】 3×100mL
【保存】 2~8℃ , 避光，12 个月。
【产品组成】
Component
3×100mL
Store at
试剂（A）:过碘酸溶液
100mL
2~8℃ , 避光
试剂（B）:Schiff 试剂
100mL
2~8℃ , 避光
试剂（C）:亚硫酸溶液
100mL
10~30℃
【产品简介】
糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus 在 1946 年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色试剂盒不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸（又称高碘酸）是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的 1 ，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与 Schiff 试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。 由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。
糖原 PAS 快速染色液的特点:采用特有配方技术，大大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷。与常规糖原 PAS 染色试剂盒相比，少了苏木素染细胞核的步骤，大大提高了工作效率，适用于石蜡切片和冰冻切片。
【使用方法】
1 、组织固定:石蜡切片固定于 Carnoy 固定液较好，可在 4℃下固定以为避免极化。小块组织 2~3h ，大块组织可以适当延长时间，但不宜超过 18h 。固定后的组织可直接用 95%乙醇浸洗几次，然后入无水酒精脱水，再透明包埋。
2 、石蜡切片脱蜡入蒸馏水。冰冻切片直接入蒸馏水。
3 、蒸馏水浸洗 2 次。
4 、入过碘酸溶液，室温氧化 2~5min ，一般不宜超过 8min。
5 、蒸馏水浸洗 2 次。
6 、入 Schiff 试剂，置于室温阴暗处浸染 10~20min（冰冻切片 10~ 15min ，石蜡切片可适当延长时间）。
7 、在上述操作过程中按亚硫酸溶液:蒸馏水=1:2 的比例配制亚硫酸工作液。入亚硫酸工作液洗 3 次，每次 2min。
8 、 自来水冲洗 5~ 10min ，更换蒸馏水冲洗。
9 、逐级常规乙醇脱水。二甲苯透明，中性树胶封固。
阴性对照（可选）：
1 、取淀粉酶 1g 溶解于 PBS（pH5.3） 100mL ，处理 30~60min ，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
2 、（备选方案）取唾液片（过滤后用）处理 30~60min ，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
3 、（备选方案）如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff 试剂。结果应为阴性。
【染色结果】
PAS 反应阳性物质（糖原或多糖）
红色或紫红色
细胞核
蓝色
细胞质
深浅不一的红色
备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和 Schiff 试剂中作用时间的长短。
【注意事项】
1 、切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。
2 、过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以 18~22℃最佳。
3 、过碘酸溶液和 Schiff 试剂应置于 4℃密闭保存，提前恢复到室温，避光暗处使用。
4 、在过碘酸溶液和 Schiff 试剂中的作用时间非常重要，应该依据切片厚薄、组织的类别等决定。冷冻切片染色时间尽量要短。
5 、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
- 产品描述
- 适用范围
- 验证数据
- 参考文献
- COA
-
- 商品名称: 糖原PAS快速染色液
- 商品编号: BP-DL033
- 货号（表格）: BP-DL033
- 价格（表格）: 370
- 规格: 3×100mL
- 规格（表格，必填）: 3×100mL
- 货期: 备现货
- 储存条件: 2-8℃，避光
- 有效期: 12个月
【货号】 BP-DL033
【规格】 3×100mL
【保存】 2~8℃ , 避光，12 个月。
【产品组成】
Component
3×100mL
Store at
试剂（A）:过碘酸溶液
100mL
2~8℃ , 避光
试剂（B）:Schiff 试剂
100mL
2~8℃ , 避光
试剂（C）:亚硫酸溶液
100mL
10~30℃
【产品简介】
糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus 在 1946 年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色试剂盒不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸（又称高碘酸）是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的 1 ，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与 Schiff 试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。 由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。
糖原 PAS 快速染色液的特点:采用特有配方技术，大大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷。与常规糖原 PAS 染色试剂盒相比，少了苏木素染细胞核的步骤，大大提高了工作效率，适用于石蜡切片和冰冻切片。
【使用方法】
1 、组织固定:石蜡切片固定于 Carnoy 固定液较好，可在 4℃下固定以为避免极化。小块组织 2~3h ，大块组织可以适当延长时间，但不宜超过 18h 。固定后的组织可直接用 95%乙醇浸洗几次，然后入无水酒精脱水，再透明包埋。
2 、石蜡切片脱蜡入蒸馏水。冰冻切片直接入蒸馏水。
3 、蒸馏水浸洗 2 次。
4 、入过碘酸溶液，室温氧化 2~5min ，一般不宜超过 8min。
5 、蒸馏水浸洗 2 次。
6 、入 Schiff 试剂，置于室温阴暗处浸染 10~20min（冰冻切片 10~ 15min ，石蜡切片可适当延长时间）。
7 、在上述操作过程中按亚硫酸溶液:蒸馏水=1:2 的比例配制亚硫酸工作液。入亚硫酸工作液洗 3 次，每次 2min。
8 、 自来水冲洗 5~ 10min ，更换蒸馏水冲洗。
9 、逐级常规乙醇脱水。二甲苯透明，中性树胶封固。
阴性对照（可选）：
1 、取淀粉酶 1g 溶解于 PBS（pH5.3） 100mL ，处理 30~60min ，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
2 、（备选方案）取唾液片（过滤后用）处理 30~60min ，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
3 、（备选方案）如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff 试剂。结果应为阴性。
【染色结果】
PAS 反应阳性物质（糖原或多糖）
红色或紫红色
细胞核
蓝色
细胞质
深浅不一的红色
备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和 Schiff 试剂中作用时间的长短。
【注意事项】
1 、切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。
2 、过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以 18~22℃最佳。
3 、过碘酸溶液和 Schiff 试剂应置于 4℃密闭保存，提前恢复到室温，避光暗处使用。
4 、在过碘酸溶液和 Schiff 试剂中的作用时间非常重要，应该依据切片厚薄、组织的类别等决定。冷冻切片染色时间尽量要短。
5 、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
关键词：
糖原PAS快速染色液
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- 价格（表格）: 370
- 规格: 3×100mL
- 规格（表格，必填）: 3×100mL
- 货期: 备现货
- 储存条件: 2-8℃，避光
- 有效期: 12个月
【货号】 BP-DL033
【规格】 3×100mL
【保存】 2~8℃ , 避光，12 个月。
【产品组成】
Component
3×100mL
Store at
试剂（A）:过碘酸溶液
100mL
2~8℃ , 避光
试剂（B）:Schiff 试剂
100mL
2~8℃ , 避光
试剂（C）:亚硫酸溶液
100mL
10~30℃
【产品简介】
糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus 在 1946 年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色试剂盒不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸（又称高碘酸）是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的 1 ，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与 Schiff 试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。 由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。
糖原 PAS 快速染色液的特点:采用特有配方技术，大大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷。与常规糖原 PAS 染色试剂盒相比，少了苏木素染细胞核的步骤，大大提高了工作效率，适用于石蜡切片和冰冻切片。
【使用方法】
1 、组织固定:石蜡切片固定于 Carnoy 固定液较好，可在 4℃下固定以为避免极化。小块组织 2~3h ，大块组织可以适当延长时间，但不宜超过 18h 。固定后的组织可直接用 95%乙醇浸洗几次，然后入无水酒精脱水，再透明包埋。
2 、石蜡切片脱蜡入蒸馏水。冰冻切片直接入蒸馏水。
3 、蒸馏水浸洗 2 次。
4 、入过碘酸溶液，室温氧化 2~5min ，一般不宜超过 8min。
5 、蒸馏水浸洗 2 次。
6 、入 Schiff 试剂，置于室温阴暗处浸染 10~20min（冰冻切片 10~ 15min ，石蜡切片可适当延长时间）。
7 、在上述操作过程中按亚硫酸溶液:蒸馏水=1:2 的比例配制亚硫酸工作液。入亚硫酸工作液洗 3 次，每次 2min。
8 、 自来水冲洗 5~ 10min ，更换蒸馏水冲洗。
9 、逐级常规乙醇脱水。二甲苯透明，中性树胶封固。
阴性对照（可选）：
1 、取淀粉酶 1g 溶解于 PBS（pH5.3） 100mL ，处理 30~60min ，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
2 、（备选方案）取唾液片（过滤后用）处理 30~60min ，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
3 、（备选方案）如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff 试剂。结果应为阴性。
【染色结果】
PAS 反应阳性物质（糖原或多糖）
红色或紫红色
细胞核
蓝色
细胞质
深浅不一的红色
备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和 Schiff 试剂中作用时间的长短。
【注意事项】
1 、切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。
2 、过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以 18~22℃最佳。
3 、过碘酸溶液和 Schiff 试剂应置于 4℃密闭保存，提前恢复到室温，避光暗处使用。
4 、在过碘酸溶液和 Schiff 试剂中的作用时间非常重要，应该依据切片厚薄、组织的类别等决定。冷冻切片染色时间尽量要短。
5 、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
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