产品中心
PRODUCTS CENTER
- 产品描述
- 适用范围
- 验证数据
- 参考文献
- COA
-
- 商品名称: 糖原D-PAS染色液(淀粉酶消化法)
- 商品编号: BP-DL034
- 货号（表格）: BP-DL034
- 价格（表格）: 270/490
- 规格: 5×50mL/5×100mL
- 规格（表格，必填）: 5×50mL/5×100mL
- 货期: 备现货
- 储存条件: 2-8℃，避光
- 有效期: 6个月
【货号】 BP-DL034
【规格】 5×50mL/5×100mL
【保存】 2~8℃ , 避光，6 个月。
【产品组成】
Component
5×50mL
5×100mL
Store at
试剂（A）:淀粉酶溶液
50mL
100mL
2~8℃
试剂（B）:过碘酸溶液
50mL
100mL
2~8℃ , 避光
试剂（C）:Schiff 试剂
50mL
100mL
2~8℃ , 避光
试剂（D）:Mayer 苏木素染色液
50mL
100mL
2~8℃ , 避光
试剂（E）:酸性乙醇分化液
50mL
100mL
10~30℃
【产品简介】
糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1946年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色试剂盒不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸（又称高碘酸）是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1 ，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。 由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。PAS技术是唯一可检测不同种类的黏液物质（如糖原、黏蛋白和糖蛋白） 的方法，但PAS技术却不能区别黏蛋白和糖原。若要准确鉴别黏液物质（如黏蛋白或糖原） ，需加入糖原消化步骤。大多数情况
下可用α–淀粉酶或麦芽淀粉酶来催化糖原的糖苷键水解，形成水溶性的双糖-麦芽糖，在应用PAS技术之前将糖原从组织切片上除去。人类的唾液被认为是消化糖原的一种有效手段，但是出于安全以及缺乏标准唾液的考虑，不主张应用唾液。
糖原D-PAS染色液的特点在于糖原PAS染色之前经淀粉酶处理，糖原消化时需要两张相同的切片，脱蜡后一张切片用含有淀粉酶的适当缓冲液处理，另一张仅用缓冲液处理。然后两张切片均用PAS法染色，消化后染色消失表明存在糖原。
【使用方法】
1 、两张相同切片，二甲苯脱蜡，梯度乙醇入水。
2 、一张切片入37℃淀粉酶溶液处理1h 。另一张不用淀粉酶溶液处理，入水中保持湿润即可。
3 、流水冲洗两张切片各5~ 10min。
4 、入过碘酸溶液，室温放置5~8min ，一般不宜超过10min。
5 、用蒸馏水浸洗2次，每次30s。
6 、入Schiff 试剂，置于室温阴暗处浸染15min。
7 、 自来水冲洗10min。
8 、入Mayer苏木素染色液，染细胞核1~2min。
9 、（可选）酸性乙醇分化液分化2~5s。
10 、 自来水冲洗10~ 15min ，更换蒸馏水清洗使其返蓝。
11 、二甲苯透明，中性树胶封固。
【染色结果】
糖原、中性，唾液黏蛋白
红紫色
各种糖蛋白
红紫色
细胞核
蓝色
未处理的切片，糖原呈亮红色或红紫色；淀粉
酶处理的切片，糖原阴性。
【注意事项】
1 、切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。需使用一张阳性对照片验证酶的活性。
2 、过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时温度以18~22℃最佳。
3 、试剂（A） 、试剂（B） 、试剂（C） 、试剂（D）应置于4℃密闭保存，使用时避免接触过多的阳光和空气，使用前最好提前取出恢复到在室温后，避光暗处使用。
4 、酸性乙醇分化液应经常更换新液，其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和酸性乙醇分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。
5 、在过碘酸溶液和Schiff 试剂中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织类别等决定。
6 、冷冻切片染色时间尽量要短。
7 、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
- 产品描述
- 适用范围
- 验证数据
- 参考文献
- COA
-
- 商品名称: 糖原D-PAS染色液(淀粉酶消化法)
- 商品编号: BP-DL034
- 货号（表格）: BP-DL034
- 价格（表格）: 270/490
- 规格: 5×50mL/5×100mL
- 规格（表格，必填）: 5×50mL/5×100mL
- 货期: 备现货
- 储存条件: 2-8℃，避光
- 有效期: 6个月
【货号】 BP-DL034
【规格】 5×50mL/5×100mL
【保存】 2~8℃ , 避光，6 个月。
【产品组成】
Component
5×50mL
5×100mL
Store at
试剂（A）:淀粉酶溶液
50mL
100mL
2~8℃
试剂（B）:过碘酸溶液
50mL
100mL
2~8℃ , 避光
试剂（C）:Schiff 试剂
50mL
100mL
2~8℃ , 避光
试剂（D）:Mayer 苏木素染色液
50mL
100mL
2~8℃ , 避光
试剂（E）:酸性乙醇分化液
50mL
100mL
10~30℃
【产品简介】
糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1946年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色试剂盒不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸（又称高碘酸）是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1 ，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。 由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。PAS技术是唯一可检测不同种类的黏液物质（如糖原、黏蛋白和糖蛋白） 的方法，但PAS技术却不能区别黏蛋白和糖原。若要准确鉴别黏液物质（如黏蛋白或糖原） ，需加入糖原消化步骤。大多数情况
下可用α–淀粉酶或麦芽淀粉酶来催化糖原的糖苷键水解，形成水溶性的双糖-麦芽糖，在应用PAS技术之前将糖原从组织切片上除去。人类的唾液被认为是消化糖原的一种有效手段，但是出于安全以及缺乏标准唾液的考虑，不主张应用唾液。
糖原D-PAS染色液的特点在于糖原PAS染色之前经淀粉酶处理，糖原消化时需要两张相同的切片，脱蜡后一张切片用含有淀粉酶的适当缓冲液处理，另一张仅用缓冲液处理。然后两张切片均用PAS法染色，消化后染色消失表明存在糖原。
【使用方法】
1 、两张相同切片，二甲苯脱蜡，梯度乙醇入水。
2 、一张切片入37℃淀粉酶溶液处理1h 。另一张不用淀粉酶溶液处理，入水中保持湿润即可。
3 、流水冲洗两张切片各5~ 10min。
4 、入过碘酸溶液，室温放置5~8min ，一般不宜超过10min。
5 、用蒸馏水浸洗2次，每次30s。
6 、入Schiff 试剂，置于室温阴暗处浸染15min。
7 、 自来水冲洗10min。
8 、入Mayer苏木素染色液，染细胞核1~2min。
9 、（可选）酸性乙醇分化液分化2~5s。
10 、 自来水冲洗10~ 15min ，更换蒸馏水清洗使其返蓝。
11 、二甲苯透明，中性树胶封固。
【染色结果】
糖原、中性，唾液黏蛋白
红紫色
各种糖蛋白
红紫色
细胞核
蓝色
未处理的切片，糖原呈亮红色或红紫色；淀粉
酶处理的切片，糖原阴性。
【注意事项】
1 、切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。需使用一张阳性对照片验证酶的活性。
2 、过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时温度以18~22℃最佳。
3 、试剂（A） 、试剂（B） 、试剂（C） 、试剂（D）应置于4℃密闭保存，使用时避免接触过多的阳光和空气，使用前最好提前取出恢复到在室温后，避光暗处使用。
4 、酸性乙醇分化液应经常更换新液，其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和酸性乙醇分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。
5 、在过碘酸溶液和Schiff 试剂中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织类别等决定。
6 、冷冻切片染色时间尽量要短。
7 、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
关键词：
糖原D-PAS染色液(淀粉酶消化法)
上一页
下一页
- 产品描述
- 适用范围
- 验证数据
- 参考文献
- COA
-
- 商品名称: 糖原D-PAS染色液(淀粉酶消化法)
- 商品编号: BP-DL034
- 货号（表格）: BP-DL034
- 价格（表格）: 270/490
- 规格: 5×50mL/5×100mL
- 规格（表格，必填）: 5×50mL/5×100mL
- 货期: 备现货
- 储存条件: 2-8℃，避光
- 有效期: 6个月
【货号】 BP-DL034
【规格】 5×50mL/5×100mL
【保存】 2~8℃ , 避光，6 个月。
【产品组成】
Component
5×50mL
5×100mL
Store at
试剂（A）:淀粉酶溶液
50mL
100mL
2~8℃
试剂（B）:过碘酸溶液
50mL
100mL
2~8℃ , 避光
试剂（C）:Schiff 试剂
50mL
100mL
2~8℃ , 避光
试剂（D）:Mayer 苏木素染色液
50mL
100mL
2~8℃ , 避光
试剂（E）:酸性乙醇分化液
50mL
100mL
10~30℃
【产品简介】
糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1946年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色试剂盒不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸（又称高碘酸）是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1 ，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。 由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。PAS技术是唯一可检测不同种类的黏液物质（如糖原、黏蛋白和糖蛋白） 的方法，但PAS技术却不能区别黏蛋白和糖原。若要准确鉴别黏液物质（如黏蛋白或糖原） ，需加入糖原消化步骤。大多数情况
下可用α–淀粉酶或麦芽淀粉酶来催化糖原的糖苷键水解，形成水溶性的双糖-麦芽糖，在应用PAS技术之前将糖原从组织切片上除去。人类的唾液被认为是消化糖原的一种有效手段，但是出于安全以及缺乏标准唾液的考虑，不主张应用唾液。
糖原D-PAS染色液的特点在于糖原PAS染色之前经淀粉酶处理，糖原消化时需要两张相同的切片，脱蜡后一张切片用含有淀粉酶的适当缓冲液处理，另一张仅用缓冲液处理。然后两张切片均用PAS法染色，消化后染色消失表明存在糖原。
【使用方法】
1 、两张相同切片，二甲苯脱蜡，梯度乙醇入水。
2 、一张切片入37℃淀粉酶溶液处理1h 。另一张不用淀粉酶溶液处理，入水中保持湿润即可。
3 、流水冲洗两张切片各5~ 10min。
4 、入过碘酸溶液，室温放置5~8min ，一般不宜超过10min。
5 、用蒸馏水浸洗2次，每次30s。
6 、入Schiff 试剂，置于室温阴暗处浸染15min。
7 、 自来水冲洗10min。
8 、入Mayer苏木素染色液，染细胞核1~2min。
9 、（可选）酸性乙醇分化液分化2~5s。
10 、 自来水冲洗10~ 15min ，更换蒸馏水清洗使其返蓝。
11 、二甲苯透明，中性树胶封固。
【染色结果】
糖原、中性，唾液黏蛋白
红紫色
各种糖蛋白
红紫色
细胞核
蓝色
未处理的切片，糖原呈亮红色或红紫色；淀粉
酶处理的切片，糖原阴性。
【注意事项】
1 、切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。需使用一张阳性对照片验证酶的活性。
2 、过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时温度以18~22℃最佳。
3 、试剂（A） 、试剂（B） 、试剂（C） 、试剂（D）应置于4℃密闭保存，使用时避免接触过多的阳光和空气，使用前最好提前取出恢复到在室温后，避光暗处使用。
4 、酸性乙醇分化液应经常更换新液，其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和酸性乙醇分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。
5 、在过碘酸溶液和Schiff 试剂中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织类别等决定。
6 、冷冻切片染色时间尽量要短。
7 、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
关键词：
糖原D-PAS染色液(淀粉酶消化法)
相关内容
关注公众号
