产品中心
PRODUCTS CENTER
- 产品描述
- 适用范围
- 验证数据
- 参考文献
- COA
-
- 商品名称: 糖原PAS染色液(真菌专用)
- 商品编号: BP-DL035
- 货号（表格）: BP-DL035
- 价格（表格）: 170/350
- 规格: 4×20mL/4×50mL
- 规格（表格，必填）: 4×20mL/4×50mL
- 货期: 备现货
- 储存条件: 2-8℃，避光
- 有效期: 12个月
【货号】 BP-DL035
【规格】 4×20mL/4×50mL
【保存】 2~8℃ , 避光，12 个月。
【产品组成】
Component
4×20mL
4×50mL
Store at
试剂（A）:过碘酸溶液
20mL
50mL
2~8℃ , 避光
试剂（B）:Schiff 试剂
20mL
50mL
2~8℃ , 避光
试剂（C）:亚硫酸钠溶液
20mL
50mL
10~30℃
试剂（D）:Mayer 苏木素染色液
20mL
50mL
2~8℃ , 避光
【产品简介】
糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus 在 1946 年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该技术不仅能显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸（又称高碘酸）是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的 1 ，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与 Schiff 试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。 由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。
糖原 PAS 染色液（真菌专用）利用真菌含有多糖，过碘酸氧化真菌壁上的多糖而暴露出醛基，醛基与无色 Schiff 结合呈现红色。该染色法性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需 0.5h；低浓度过碘酸更适用于对真菌染色，无盐酸乙醇分化液分化步骤。
【使用方法】
1 、常规固定（常采用 10%福尔马林），常规脱水包埋。
2 、细胞涂片入蒸馏水（无需包埋、脱蜡）或组织切片脱蜡入蒸馏水。
3 、入过碘酸溶液，室温氧化 5~8min。
4 、蒸馏水浸洗 2 次，每次 2min。
5 、入 Schiff 试剂并加盖，置于室温阴暗处浸染 10~20min。
6 、亚硫酸钠溶液滴洗 2 次，每次 1min。
7 、流水冲洗 2min。
8 、（选做）Mayer 苏木素染色液浅染核 2～3 分钟。
9 、流水冲洗 10 分钟。（亦可自行配制 0.5～1%酸性乙醇分化液快速分化数秒）。
10 、逐级常规脱水透明，中性树胶封固。
阴性对照（可选）：
1 、取淀粉酶 1g 溶解于 PBS（pH5.3）100ml ，处理 30~60min ，与其他样本共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
2 、（备选方案）取唾液片（过滤后用）处理 30~60min ，与其他样本共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
3 、（备选方案）如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff 试剂。结果应为阴性。
【染色结果】
真菌
紫红色
细胞核
蓝色
备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和 Schiff Reagent 中作用时间的长短。
【注意事项】
1 、过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以 18~22℃最佳。
2 、过碘酸溶液、Schiff 试剂使用时避免接触过多的阳光和空气 ，使用前最好提前30min 取出恢复至室温，避光暗处使用。
3 、过碘酸溶液和 Schiff 试剂中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、细胞或组织的类别等决定。
4 、如常规切片建议用糖原 PAS 染色液，因为其过碘酸溶液和苏木素溶液浓度都相对较高。
5 、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
- 产品描述
- 适用范围
- 验证数据
- 参考文献
- COA
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- 商品名称: 糖原PAS染色液(真菌专用)
- 商品编号: BP-DL035
- 货号（表格）: BP-DL035
- 价格（表格）: 170/350
- 规格: 4×20mL/4×50mL
- 规格（表格，必填）: 4×20mL/4×50mL
- 货期: 备现货
- 储存条件: 2-8℃，避光
- 有效期: 12个月
【货号】 BP-DL035
【规格】 4×20mL/4×50mL
【保存】 2~8℃ , 避光，12 个月。
【产品组成】
Component
4×20mL
4×50mL
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试剂（A）:过碘酸溶液
20mL
50mL
2~8℃ , 避光
试剂（B）:Schiff 试剂
20mL
50mL
2~8℃ , 避光
试剂（C）:亚硫酸钠溶液
20mL
50mL
10~30℃
试剂（D）:Mayer 苏木素染色液
20mL
50mL
2~8℃ , 避光
【产品简介】
糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus 在 1946 年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该技术不仅能显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸（又称高碘酸）是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的 1 ，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与 Schiff 试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。 由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。
糖原 PAS 染色液（真菌专用）利用真菌含有多糖，过碘酸氧化真菌壁上的多糖而暴露出醛基，醛基与无色 Schiff 结合呈现红色。该染色法性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需 0.5h；低浓度过碘酸更适用于对真菌染色，无盐酸乙醇分化液分化步骤。
【使用方法】
1 、常规固定（常采用 10%福尔马林），常规脱水包埋。
2 、细胞涂片入蒸馏水（无需包埋、脱蜡）或组织切片脱蜡入蒸馏水。
3 、入过碘酸溶液，室温氧化 5~8min。
4 、蒸馏水浸洗 2 次，每次 2min。
5 、入 Schiff 试剂并加盖，置于室温阴暗处浸染 10~20min。
6 、亚硫酸钠溶液滴洗 2 次，每次 1min。
7 、流水冲洗 2min。
8 、（选做）Mayer 苏木素染色液浅染核 2～3 分钟。
9 、流水冲洗 10 分钟。（亦可自行配制 0.5～1%酸性乙醇分化液快速分化数秒）。
10 、逐级常规脱水透明，中性树胶封固。
阴性对照（可选）：
1 、取淀粉酶 1g 溶解于 PBS（pH5.3）100ml ，处理 30~60min ，与其他样本共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
2 、（备选方案）取唾液片（过滤后用）处理 30~60min ，与其他样本共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
3 、（备选方案）如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff 试剂。结果应为阴性。
【染色结果】
真菌
紫红色
细胞核
蓝色
备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和 Schiff Reagent 中作用时间的长短。
【注意事项】
1 、过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以 18~22℃最佳。
2 、过碘酸溶液、Schiff 试剂使用时避免接触过多的阳光和空气 ，使用前最好提前30min 取出恢复至室温，避光暗处使用。
3 、过碘酸溶液和 Schiff 试剂中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、细胞或组织的类别等决定。
4 、如常规切片建议用糖原 PAS 染色液，因为其过碘酸溶液和苏木素溶液浓度都相对较高。
5 、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
关键词：
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- 价格（表格）: 170/350
- 规格: 4×20mL/4×50mL
- 规格（表格，必填）: 4×20mL/4×50mL
- 货期: 备现货
- 储存条件: 2-8℃，避光
- 有效期: 12个月
【货号】 BP-DL035
【规格】 4×20mL/4×50mL
【保存】 2~8℃ , 避光，12 个月。
【产品组成】
Component
4×20mL
4×50mL
Store at
试剂（A）:过碘酸溶液
20mL
50mL
2~8℃ , 避光
试剂（B）:Schiff 试剂
20mL
50mL
2~8℃ , 避光
试剂（C）:亚硫酸钠溶液
20mL
50mL
10~30℃
试剂（D）:Mayer 苏木素染色液
20mL
50mL
2~8℃ , 避光
【产品简介】
糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus 在 1946 年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该技术不仅能显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸（又称高碘酸）是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的 1 ，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与 Schiff 试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。 由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。
糖原 PAS 染色液（真菌专用）利用真菌含有多糖，过碘酸氧化真菌壁上的多糖而暴露出醛基，醛基与无色 Schiff 结合呈现红色。该染色法性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需 0.5h；低浓度过碘酸更适用于对真菌染色，无盐酸乙醇分化液分化步骤。
【使用方法】
1 、常规固定（常采用 10%福尔马林），常规脱水包埋。
2 、细胞涂片入蒸馏水（无需包埋、脱蜡）或组织切片脱蜡入蒸馏水。
3 、入过碘酸溶液，室温氧化 5~8min。
4 、蒸馏水浸洗 2 次，每次 2min。
5 、入 Schiff 试剂并加盖，置于室温阴暗处浸染 10~20min。
6 、亚硫酸钠溶液滴洗 2 次，每次 1min。
7 、流水冲洗 2min。
8 、（选做）Mayer 苏木素染色液浅染核 2～3 分钟。
9 、流水冲洗 10 分钟。（亦可自行配制 0.5～1%酸性乙醇分化液快速分化数秒）。
10 、逐级常规脱水透明，中性树胶封固。
阴性对照（可选）：
1 、取淀粉酶 1g 溶解于 PBS（pH5.3）100ml ，处理 30~60min ，与其他样本共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
2 、（备选方案）取唾液片（过滤后用）处理 30~60min ，与其他样本共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
3 、（备选方案）如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff 试剂。结果应为阴性。
【染色结果】
真菌
紫红色
细胞核
蓝色
备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和 Schiff Reagent 中作用时间的长短。
【注意事项】
1 、过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以 18~22℃最佳。
2 、过碘酸溶液、Schiff 试剂使用时避免接触过多的阳光和空气 ，使用前最好提前30min 取出恢复至室温，避光暗处使用。
3 、过碘酸溶液和 Schiff 试剂中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、细胞或组织的类别等决定。
4 、如常规切片建议用糖原 PAS 染色液，因为其过碘酸溶液和苏木素溶液浓度都相对较高。
5 、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
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糖原PAS染色液(真菌专用)
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